薏米,又叫薏苡仁,为禾本科植物薏苡(Coix lacry- ma-jobi L.)的种仁。薏苡是一种营养丰富的粮药兼用 的一年生或多年生植物,其种仁薏米具有较全面的营 养成分和特殊的药用保健功效。薏米多糖的单糖组分 较复杂,包括葡萄糖、甘露糖、阿拉伯糖、鼠李糖、半乳糖,是药理活性较高的物质,具有降血脂、降血糖、调 节免疫和防治肿瘤等功效。同时,薏米多糖具有良好 的耐热性能,在 100 ℃左右具有较好的稳定性;并具 有一定的抗氧化性,对超氧阴离子自由基(O2 - ·)、羟基 自由基(·OH)以及 DPPH 自由基具有清除能力。对薏 米多糖提取工艺的已有研究有水提法、超声或微波辅 助提取法、以及亚临界水萃取法等。
1 材料与方法
1.1 材料与仪器
1.1.1 材料
薏米:市售。 1.1.2 试剂 石油醚、95 %乙醇、无水乙醇、无水乙醚、5 %苯 酚、浓硫酸、硫酸亚铁、30 %双氧水、水杨酸(分析纯): 天津市福晨化学试剂厂。
1.1.3 仪器
AUV120 电子分析天平:上海玉博生物科技有限公 司;WG-71 鼓风干燥机粉碎机:天津市泰斯特仪器有限 公司;HH-W600 数显三用恒温水箱:金坛市亿通电子 有限公司;KQ3200E 超声波清洗器:昆山舒美超声仪 器有限公司;R-201 真空旋转蒸发器:郑州长城科工贸 有限公司;UV2800 紫外可见分光光度计:上海舜宇恒 平科学仪器有限公司;TG16G 高速离心机:湖南省凯达 科学仪器有限公司;GDYQ-701S 样品提取仪:长春小 天鹅仪器有限公司。
1.2 试验方法
1.2.1 薏米多糖提取工艺流程
筛选薏米→粉碎→脱脂→超声水浴浸提→过 滤→旋转蒸发→滤液醇沉→离心→洗涤→干燥→粗 多糖→溶解→待测液→测吸光度 关键步骤如下:
1)薏米脱脂:准确称取 20 g 薏米粉,置于索氏提 取器,加石油醚回流(60 ℃)脱脂 2 次,每次 2 h 得到脱 脂产物,于 3 ℃贮藏备用。
2)超声水浴浸提:取一定量的脱脂薏米粉,加入蒸 馏水,搅拌均匀,超声提取 50 min 后,在电热恒温水浴 锅中加热提取多糖。
3)滤液醇沉:将上清液浓缩至原来的三分之一,再 加入 3 倍体积的 95 %乙醇溶液,静置 30 min 后离心 (转速为 6 500 r/min,时间为 20 min),去上清液,得沉 淀物,此沉淀物就是粗多糖。
4)洗涤:依次用无水乙醇、乙醚洗涤 2 次,以便破 坏水解残留的脂溶性杂质。
1.2.2 测定多糖含量
采用苯酚-硫酸法测定多糖含量。
1)标准曲线绘制:精密称取干燥葡萄糖 0.151 g, 加蒸馏水溶解,定容至 100 mL 容量瓶中,充分摇匀,得 到质量浓度为 100 mg/mL 的葡萄糖标准溶液。吸取 1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL 的葡萄糖标准溶液分别置于100 mL 容量瓶中,定容、摇匀。分别吸取各溶液 2 mL 于试管中,分别加入 5 %苯酚 1.0 mL、浓硫酸 5.0 mL, 用 2.0 mL 蒸馏水做空白对照和调零,静置 10 min,于 60 ℃恒温水浴 10 min 取出,迅速冷却至室温 20 ℃。在 波长为 490 nm 下测定吸光度,绘制标准曲线并进行回归 处理,得到回归方程为 Y=0.011 9x+0.010 3,R2 =0.993 2。 在 0~80 μg/mL 范围内,吸光度和葡萄糖标准液的浓度 呈良好的线性关系。
2)待测液中多糖的测定:精确吸取待测液 2 mL 于 10 mL 的容量瓶中,加蒸馏水稀释至刻度,摇匀、静置。 从中吸取 2.0 mL 液体至试管中,加入 5 %苯酚 1.0 mL、 浓硫酸 5.0 mL,摇匀。室温 20 ℃静置 10 min 后放置 60 ℃ 恒温水浴 10min 取出,迅速冷却至室温 20 ℃。在波长为 490nm 下测得吸光度值,根据标准曲线回归方程计算 出多糖浓度,求出多糖得率。多糖得率的计算公式如下: 得率/%= C×V M ×100 式中:C 为薏米多糖浓度,mg/mL;V 为稀释总体 积,mL;M 为薏米粉的质量,g。
1.2.3 单因素试验
1)料液比的选择:固定水提取液 pH 值为 5.0,水 浴加热温度为 70 ℃,提取 3 h,料液比分别设置为 1 ∶ 10、 1 ∶ 15、1 ∶ 20、1 ∶ 25、1 ∶ 30(g/mL),平行试验 3 次,研究 料液比对薏米多糖得率的影响。
2)提取温度的选择:固定水提取液 pH 值为 5.0, 体积 60 mL,水浴加热温度分别设置为 65、70、75、80、 85 ℃,提取 3 h,平行试验 3 次,研究提取温度对薏米 多糖得率的影响。
3)pH 值的选择:固定水提取液体积 60 mL,水浴 加热温度为 70 ℃,pH 值分别设置为 3.5、4、4.5、5、5.5, 提取 3 h,平行试验 3 次,研究 pH 值对薏米多糖得率 的影响。
4)提取时间的选择:固定水提取液 pH 值为 5.0, 体积 60 mL,水浴加热温度为 70 ℃,提取时间分别设 置为 0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 h,平行试验 3 次,研究提取 时间对薏米多糖得率的影响。
1.2.4 正交优化试验
在单因素试验的基础上,以提取温度、提取时间、 料液比及 pH 值为试验因素,根据单因素试验结果,进 行四因素三水平试验确定水提醇沉法提取薏米多糖 的最佳工艺参数。
1.2.5 羟基自由基清除试验
薏米多糖及维生素 C 对羟基自由基的清除率,采 用水杨酸法进行测定。对羟基自由基的清除率按下式 计算:E/%= A0-(Am-An ) A0 ×100
式中:E 为羟基自由基的清除率;A0 为空白对照 液的吸光值;Am 为加入多糖后的吸光值;An 为不加 H2O2 时多糖的吸光值。
2 结果与分析
随着液体量的增加,薏米多糖得率逐 渐提高,当料液比为 1 ∶ 25(g/mL)时,薏米多糖得率达 到最高,之后下降。这可能是由于一定比例的料液比 已经使溶出的多糖量达到平衡,继续增大料液比,可 能使其他物质溶出,多糖的相对得率就降低了。另外, 料液比过大会增加溶剂的用量,本着节约成本的原 则,料液比为 1 ∶ 25(g/mL)左右为宜。随着提取温度升高,薏米多糖得率不 断增加,在 75 ℃时,薏米多糖得率最高,之后缓慢下 降。这可能是由于温度升高,分子运动速度加快,多糖 更容易浸出,但是过高的温度易导致多糖结构被破 坏,进而造成多糖含量降低。因此,提取温度应控制在75 ℃左右为宜。薏米的多糖得率随着 pH 值的升高 而增大,pH 值为 4 时多糖得率达到最大,继续升高 pH 值多糖得率开始降低,但在 pH 值为 4.5 和 5 时降低幅 度不明显。这可能是由于 pH 值为 4~5 时,有利于多糖 最大程度的溶出,继续升高 pH 值会影响多糖的结构 稳定性。因此,pH 值应控制在 4~5 之间。随着提取时间增加,薏米多糖得率 不断增加,在提取时间为 1.5 h 时,薏米多糖得率最高, 之后逐渐下降。这可能是由于提取时间过短,多糖还 没有充分溶出,时间过长又使其他物质的溶出,影响 多糖的浸出影响,或多糖提取物中的结构分被破坏。 因此,提取时间选择 1.5 h 左右为宜。
3 讨论与结论
多糖广泛存在于植物体内,具有较高的药理活 性。水提醇沉法目前在植物活性多糖提取中应用最 多,利用该法提取黄精多糖肽得率为 0.34 %,提取山 苦茶、苦瓜、芦竹及向日葵茎芯等多糖得率分别 为 1.012 %、3. 12 %、4. 80 %和 6. 56 %。可见,不同的植 物利用水提醇沉法提取多糖得率差别较大。利用超声 波辅助提取,多糖的浸提过程和活性不发生改变,浸 提时间缩短,可以提高提取效率。本试验在超声辅助 水提醇沉法的最优条件下,即提取时间为 2 h,提取温 度为 75 ℃,pH 值为 5,料液比为 1 ∶ 20(g/mL)时,薏米 多糖得率为 1.56 %,高于刑真等利用热水浸提法提 取薏米多糖的提取率 1.25 %以及利用超声波辅助提 取薏米多糖的提取率 1.41 %。综合考虑时间和能耗因 素,超声波辅助水提醇沉法适宜于在省时节能的情况 下提取薏米多糖。 羟基自由基能破坏细胞膜、杀死机体红细胞、诱 导基因突变、诱发多种疾病,进而引起生命发生系统 性的紊乱。研制价格低廉经济有效的抗氧化剂是对抗 羟基自由基的有效途径。研究表明,羊肚菌、别克参、 玫瑰茄等的多糖均具有一定的抗氧化能力。本试验 中,在相同质量浓度下,薏米多糖提取物对羟基自由 基具有一定的清除作用,但效果弱于维生素 C。因此, 加强薏米活性成分研究,扩大薏米资源的开发利用, 有助于进一步推动薏米产业化发展。